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助力多實(shí)驗(yàn)場(chǎng)景應(yīng)用 | MM-500電動(dòng)顯微操縱器,是你工作時(shí)的好幫手!

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公司資訊
  • 2021-11-19

  • 來(lái)源:瑞沃德

  • 瀏覽量:2576

提起顯微操縱器,只想到膜片鉗實(shí)驗(yàn)中夾持玻璃微電極的作用?不不不,現(xiàn)在RWD MM-500電動(dòng)顯微操縱器能提供的遠(yuǎn)不止于此。下面將詳細(xì)介紹微操在膜片鉗、顯微注射、其他等方面的應(yīng)用。

膜片鉗實(shí)驗(yàn) 

作用方式: 通過(guò)移動(dòng)夾持在放大器探頭上的玻璃微電極,根據(jù)選擇的記錄模式(細(xì)胞貼附式、全細(xì)胞模式等),完成微電極與細(xì)胞膜的緊密封接,記錄細(xì)胞膜上的微弱信號(hào)。

1-電動(dòng)顯微操縱器.png 2-電動(dòng)顯微操縱器.png

MM-500電動(dòng)顯微操縱器性能穩(wěn)定、功能豐富、體積小巧、智能簡(jiǎn)便,是您膜片鉗實(shí)驗(yàn)的得力小助手~

作用場(chǎng)景

離子通道疾病研究 [1];

離子通道功能研究 [2];

活性藥物篩選研究 [3];

藥物作用機(jī)制研究 [4];

……

3-離子通道疾病的主要類型.png

【1】離子通道疾病的主要類型。 

4-測(cè)量離子通道活性.png

【2】膜片鉗實(shí)驗(yàn)測(cè)量離子通道活性,以乙酰膽堿敏感鉀通道 (IK.ACh) 為例。

5-心臟藥物篩選對(duì)比.png

【3】使用在體傳統(tǒng)方式和離體新型方式的心臟藥物篩選對(duì)比。新型藥物篩選方式利用人源性多能干細(xì)胞衍生的心肌細(xì)胞,暴露于心臟活性藥物后通常使用膜片鉗實(shí)驗(yàn)和微電極陣列 (MEA) 測(cè)量動(dòng)作電位持續(xù)時(shí)間、場(chǎng)電位持續(xù)時(shí)間等。

6-不同藥物作用機(jī)制研究.png

【4】使用膜片鉗實(shí)驗(yàn)對(duì)離體細(xì)胞進(jìn)行不同藥物作用機(jī)制研究。

 顯微注射實(shí)驗(yàn) 

一、MM-500 電動(dòng)顯微操縱器& R480玻璃微電極注射泵

作用方式: 通過(guò)移動(dòng)夾持在R480 玻璃微電極注射泵上的玻璃微電極進(jìn)行納升級(jí)定量定速的注射或抽吸。

7-電動(dòng)顯微操縱器和注射泵.png

MM-500電動(dòng)顯微操縱器可搭配R480玻璃微電極注射泵進(jìn)行納升級(jí)顯微注射實(shí)驗(yàn),以恒定速度和位移穩(wěn)定移動(dòng)玻璃微電極,夾持角度隨意調(diào)節(jié)。便捷易用,省心省力~

作用場(chǎng)景

爪蟾卵母細(xì)胞的RNA顯微注射 [5];

斑馬魚胚胎顯微注射 [6];

昆蟲及原生動(dòng)物卵細(xì)胞、幼體等注射(如果蠅 [7]、線蟲 [8]等);

哺乳動(dòng)物細(xì)胞的顯微注射 [9];

……

8-注射DNA和RNA.png

【5】注射DNA和RNA到非洲爪蟾卵母細(xì)胞。首先,將pAnap注入非洲爪蟾卵母細(xì)胞核(1)。6-24h后,將Anap和通道RNA共同植入植物極(2)。

9-斑馬魚胚胎的顯微注射.png

【6】斑馬魚胚胎的顯微注射。

a、顯微注射所需設(shè)備。

b、最近受精的卵。顯示了單細(xì)胞階段胚胎的早期(左)和晚期(右)階段。

c、顯微注射板:帶有V形凹槽的亞克力板,用于容納胚胎。

d、單細(xì)胞期胚胎排列在凹槽中進(jìn)行顯微注射。

e、通過(guò)使用玻璃微電極穿過(guò)絨毛膜并穿透卵裂球,將DNA注射到胚胎中。

10-注射氯膦酸鹽脂質(zhì)體.png

【7】通過(guò)注射氯膦酸鹽脂質(zhì)體來(lái)消耗黑腹果蠅和埃及伊蚊的吞噬免疫細(xì)胞。

11-不同給藥模式.png

【8】用于線蟲RNA干擾的dsRNA的不同給藥模式。通過(guò)浸泡或喂養(yǎng)表達(dá)dsRNA細(xì)菌的方式使dsRNA進(jìn)入線蟲體內(nèi)。注入體腔后信號(hào)可進(jìn)行全身傳播。注入雌性的性腺中可以傳遞給下一代,而無(wú)論系統(tǒng)傳播如何。

12-生成基因修飾小鼠.png

【9】通過(guò)顯微注射技術(shù)并使用CRISPR/Cas9生成基因修飾小鼠。用玻璃微注射針將gRNA和Cas9蛋白注射到小鼠胚胎的雄性原核中。在生成敲入小鼠時(shí),DNA供體也被注射到原核中。第二天在2細(xì)胞階段發(fā)育的胚胎被轉(zhuǎn)移到假孕雌性小鼠的輸卵管中,18-20天后,F(xiàn)0小鼠出生。

二、MM-500 電動(dòng)顯微操縱器& KDS Legato 130微量注射泵

作用方式: 通過(guò)移動(dòng)夾持在KDS微量注射泵上的注射針進(jìn)行微升級(jí)定量定速的注射或抽吸。

13-微升級(jí)顯微注射實(shí)驗(yàn).png

MM-500電動(dòng)顯微操縱器可搭配KDS Legato 130微量注射泵進(jìn)行微升級(jí)顯微注射實(shí)驗(yàn),夾持的范圍廣,穩(wěn)定性高,夾持角度隨意調(diào)節(jié),是您注射實(shí)驗(yàn)的不二選擇~

作用場(chǎng)景

微量注射給藥;

顱內(nèi)病毒、示蹤劑注射 [10];

眼球注射 [11];

……

14-定向注射.png

【10】AAV1/GFP載體腦定向注射到海馬區(qū)域(CA3)。

15-注射角度.png

【11】新生大鼠左眼,顯示了大致的注射角度和外赤道的位置。

 其他應(yīng)用 

作用方式: 通過(guò)移動(dòng)夾持物可對(duì)不同材料進(jìn)行壓力測(cè)試等。

作用場(chǎng)景

水凝膠的微尺度彈性模量測(cè)試 [12];

豬籠草口緣區(qū)仿生材料性能測(cè)試 [13];

……

16-微尺度彈性模量測(cè)試.png

【12】(A)和(B)實(shí)驗(yàn)裝置示意圖(不按比例)。帶有球形探針的原子力顯微鏡懸臂被壓入彈性基板中。隨著基板向上移動(dòng)距離z,懸臂彎曲距離d,基板縮進(jìn)距離δ;(C)使用熒光顯微鏡顯示了微操連接探針上熒光三聚氰胺珠;(D)探針的俯視和側(cè)視顯微圖示。

17-原位光學(xué)觀察.png

【13】豬籠草唇表面定向水運(yùn)的原位光學(xué)觀察。

a、豬籠草捕蟲籠的光學(xué)圖像,顯示了明顯的捕食者唇(左)以及唇的橫截面圖像(右)。長(zhǎng)10-15厘米,唇在其上緣。唇呈拱形,由內(nèi)向外相距約1-2厘米。

b、用微注射器將水滴(與藍(lán)色墨水混合)滴在唇上;這種液滴可以克服重力在幾秒鐘內(nèi)從內(nèi)側(cè)定向輸送到外側(cè)(不是相反方向)。紅色箭頭表示水運(yùn)方向。


【參考文獻(xiàn)】

[1] https://sophion.com/applications/other/

[2] MJ Ackerman et al. Ion channels–basic science and clinical disease [J]. New England Journal of Medicine, 1997, 336(22): 1575-1586.

[3] NM Mordwinkin et al. A review of human pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes for high-throughput drug discovery, cardiotoxicity screening, and publication standards [J]. Journal of Cardiovascular Translational Research, 2013, 6: 22-30.

[4] http://english.simm.cas.cn/rp/201111/t20111121_79138.html

[5] Kalstrup, T., Blunck, R. Voltage-clamp fluorometry in Xenopus oocytes using fluorescent unnatural amino acids [J]. Journal of Visualized Experiments, 2017, 123: e55598.

[6] Miyasaka N.,Wakisaka N.,Yoshihara Y.Genetic mosaic labeling and immunofluorescence techniques in zebrafish brain [M]. Immunocytochemistry and Related Techniques, 2015, 101: 81-92.

[7] Ramesh Kumar J, Smith JP, Kwon H and Smith RC. Use of clodronate liposomes to deplete phagocytic immune cells in drosophila melanogaster and aedes aegypti [J]. Frontiers in Cell and Developmental Biology, 2021, 9: 627976.

[8] Félix, MA. RNA interference in nematodes and the chance that favored Sydney Brenner [J]. Journal of Biology, 2008, 7: 34.

[9] Nishizono H, Yasuda R and Laviv T. Methodologies and challenges for CRISPR/Cas9 mediated genome editing of the mammalian brain [J]. Frontiers in Genome Editing, 2020, 2: 602970.

[10] Koichi Miyake, Noriko Miyake and Takashi Shimada. Gene delivery into the central nervous system (CNS) using AAV vectors [J]. 2015,26:49417.

[11] Corson TW, et al. Multimodality imaging methods for assessing retinoblastoma orthotopic xenograft growth and development [J]. PLoS ONE, 2014, 9(6): e99036.

[12] Chad D. Markert, et al. Characterizing the micro-scale elastic modulus of hydrogels for use in regenerative medicine [J]. Journal of the Mechanical Behavior of Biomedical Materials, 2013, 27: 115-127.

[13] Chen, H, et al. Continuous directional water transport on the peristome surface of Nepenthes alata [J]. Nature, 2016, 532: 85–89.

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